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Onkologische Forschungsgruppen der Medizinischen Klinik 5

Medizinische Klinik 5

Leitung

Prof. Dr. Fabian Müller

Mitglieder

  • Prof. Dr. Fabian Müller (PI)
  • Dr. rer. nat. Franziska Gsottberger (Post-Doc)
  • Dr. rer. nat. Hao Yao (Post-Doc)
  • Dr. med. Julia Katharina Scholz (Physician Scientist)
  • Giulia Benintende (Doktorandin, Physician Scientist)
  • Dr. Isabel Korte (Clinician Scientist)
  • Alessia Crocione (Doktorandin)
  • Veronika Friedrich (Doktorandin)
  • Lisa Mellenthin (TA)
  • Srdjan Petkovic (TA) 

Überblick Forschungsinhalte

Zelltherapie gehört zu den bemerkenswertesten Errungenschaften der modernen Hämatologie und Onkologie. Als „lebendes Medikament“ gibt sie Patienten mit zuvor unheilbaren Erkrankungen – darunter Krebs und Autoimmunerkrankungen – neue Hoffnung und könnte künftig auch die Behandlung von Infektionen sowie angeborenen Erkrankungen unterstützen. 

Dennoch steht die Zelltherapie weiterhin vor zahlreichen Herausforderungen. Dazu zählen unter anderem ungünstige Mikroumgebung im Tumor selbst, die eine optimale Funktion der therapeutischen Zellen beeinträchtigen können. Darüber hinaus fehlen bislang verlässliche Biomarker, um vorherzusagen, welche Patienten mehr als nur CAR-T-Zellen der zweiten Generation benötigen, ob zusätzliche Interventionen in einer spezifischen Mikroumgebung sinnvoll wären oder wie sich Zelldynamik und Entzündungszustand eines Patienten funktionell auf expandierende und infiltrierende CAR-T-Zellen im Tumormikromilieu auswirken. Aufbauend auf unserer Erfahrung im Bereich B-zellgetriebener entzündlicher Autoimmunerkrankungen sowie auf neuen Erkenntnissen zum Immunsystem von Lymphompatienten untersuchen wir diese Fragestellungen aus verschiedenen Perspektiven. 

Dazu gehört das Verständnis der durch Lymphome ausgelösten Entzündung und ihrer vielfältigen Auswirkungen auf Zelltherapien ebenso wie die gezielte, krankheitsspezifische Modulation dieser Entzündungsprozesse. Gleichzeitig nutzen wir diese Erkenntnisse, um CAR-T-Zelltherapien in vollständig immunkompetenten In-vivo-Modellen aggressiver und indolenter Lymphome weiterzuentwickeln. Im Einklang mit dem zentralen Laborthema – dem Verständnis von Resistenzmechanismen gegenüber Immuntherapien durch translationale Forschung – verfolgen wir das Ziel, neue therapeutische Strategien zu entwickeln und bestehende Behandlungen zu verbessern, um die Versorgung und die langfristigen Behandlungsergebnisse unserer Patienten in der Hämatologie, Rheumatologie, Gastroenterologie und weiteren immunvermittelten Erkrankungen nachhaltig zu verbessern.

Laufende Forschungsprojekte

  • Entwicklung von Duotoxinen (ein Antikörpermolekül + verschiedene Toxine) zur Krebstherapie (DFG-gefördert)
  • Neue Therapiekonzepte um Myc-getriebene Tumore anzugreifen (Max-Eder Nachwuchsgruppe)
  • Veränderungen des Immunsystems durch Krebs und Krebstherapie, Prädiktion Therapieversagen (ACS-Programm)
  • CAR T Zelltherapie – Toxizität (Knochenmarktoxizität u.a.); Einsatz von CAR T Zellen bei Autoimmunerkrankungen (zusammen mit Med3), Prädiktion von Therapieerfolg (in Kollaboration mit München); klinische Studien (BNT-211, Zuma-23, Daly-2)

Methoden

  • In vivo Forschung an systemischen Krebserkrankungen im immunkompetenten Modell
  • Translationale Forschung, Liquid Biopsy, Immunzellphänotypsierung, funktionelle Charakterisierung von Immunzellen
  • CAR T Zell Charakterisierung, Herstellung, Optimierung

Kooperationspartner

EXTERN:

  • Rainer Claus, UKA, Augsburg
  • Dennis Harrer, UKR, Regensburg
  • Sebastian Kobold, LMU, München
  • Ira Pastan, NCI, NIH
  • Marion Subklewe, LMU, München
  • Daniel Wolf, UKR, Regensburg

INTERN:

  • AG Aigner, Med 5, Erlangen
  • AG Brabletz, Exp. Immunologie, Erlangen
  • AG Krönke, Med 3, Erlangen
  • AG Nganou, Virologie, Erlangen
  • AG Pilarsky, Allgemeinchir. Erlangen
  • AG Stürzl, Exp. Chirurgie, Erlangen
  • AG Völkl, Med 5, Erlangen

Publikationen

Kontakt

Prof. Dr. Fabian Müller
09131 85 43107
Fabian.mueller(at)uk-erlangen.de

Weiterführende Links

https://www.medizin5.uk-erlangen.de/forschung/ag-mueller-max-eder-nachwuchsgruppe-fuer-molekulare-immuntherapie/

https://scholar.google.com/citations?hl=en&user=o_TqNNUAAAAJ

https://www.linkedin.com/in/fabian-mueller-lmit-erlangen/ 

 

Stand: 04/2026

Leitung

PD Dr. rer. nat. Heiko Bruns

Überblick Forschungsinhalte

Bei den meisten Tumorentitäten besteht das Tumormikromilieu zu einem großen Teil aus Makrophagen. Obwohl Makrophagen prinzipiell in der Lage sind, Tumorzellen zu eliminieren und bedeutende Effektorzellen für Antikörpertherapien sind, stellt die Makrophagen-Infiltration bei den meisten Tumorerkrankungen paradoxerweise einen ungünstigen prognostischen Faktor dar. Im Zentrum der Projekte unserer Arbeitsgruppe steht daher eine umfassende funktionelle und molekulare Analyse des Tumormikromilieus, insbesondere der Tumor-assoziierten Makrophagen (TAMs), und die Identifizierung und Modulierung potenzieller therapeutischer Target-Strukturen. Unser langfristiges Ziel ist das spezifische Targeting bzw. die Modulation des Tumormikromilieus zur Verstärkung der Effektivität von immuntherapeutischen Strategien bei hochmalignen Lymphomen.

Laufende Forschungsprojekte

  • Role and the importance of Tumor-associated macrophages in Multiple Myeloma (Wilhelm-Sander Stiftung)
  • Bedeutung der RNA-Methylierung beim Multiplen Myelom (Deutsche Krebshilfe)
  • Regulation of the immune balance during stem cell transplantation (SCT) by  vitamin D3 (SFB-TR221/DFG)
  • Increasing antibody-dependent cellular phagocytosis (ADCP) of Lymphoma-associated Macrophages by a combined immune modulation and CD19 targeting (MOR208) (Morphosys)

Methoden/Studien

  • Phagozytose-Assays
  • Live-Imaging Mikroskopie (Incucyte)
  • Durchflusszytometrie
  • Chromatin-Immunpräzipitation
  • Quantitative RT-PCR
  • Westernblot

Kooperationspartner

  • Dimitrios Mougiakakos, Universitätsklinik für Hämatologie und Onkologie, Universitätsklinikum Magdeburg.
  • Robert Zeiser, Klinik für Innere Medizin I, Hämatologie, Onkologie und Stammzelltransplantation Universitätsklinikum Freiburg.
  • Michael Hundemer, Klinik für Hämatologie, Onkologie, Rheumatologie, Universitätsklinikum Heidelberg.
  • Marina Kreutz, Klinik und Poliklinik für Innere Medizin III, Universitätsklinikum Regensburg.
  • Stefano Rigcagno, Department of Biosciences, Universität Mailand, Italien.
  • Jan Krönke, Department of Hematology, Oncology and Tumorimmunology, Charité Universitätsmedizin Berlin.
  • Maike Büttner-Herold, Pathologisches Institut, UK Erlangen.
  • Sven Krappmann, Medizinische Mikrobiologie, UK Erlangen.
  • Julio Vera-González, Hautklinik, UK Erlangen.

Publikationen

  • Daniel Hofbauer, Dimitrios Mougiakakos, Luca Broggini, Mario Zaiss, Maike Büttner-Herold, Christian Bach, Bernd Spriewald, Frank Neumann, Savita Bisht, Jens Nolting, Robert Zeiser, Shaima’a Hamarsheh, Martin Eberhardt, Julio Vera, Cristina Visentin, Chiara Maria Giulia De Luca, Fabio Moda, Stefan Haskamp, Cindy Flamann, Martin Böttcher, Katrin Bitterer, Simon Völkl, Andreas Mackensen, Stefano Ricagno, and Heiko Bruns. (2021). β2-microglobulin - a trigger for NLRP3 inflammasome activation in tumor-associated macrophages promoting multiple myeloma progression. Immunity. 54(8):1772-1787.
  • The regulatory IKZF1-IRF4/IRF5 axis controls polarization of myeloma-associated macrophages. Dimitrios Mougiakakos, Christian Bach, Martin Böttcher, Fabian Beier, Linda Röhner, Andrej Stoll, Michael Rehli, Claudia Gebhard, Christopher Lischer, Martin Eberhardt, Julio Vera, Maike Büttner-Herold, Katrin Bitterer, Heidi Balzer, Magdalena Leffler, Simon Jitschin, Michael Hundemer, Mohamed H. S. Awwad, Martin Busch, Steffen Stenger, Simon Voelkl, Christian Schütz, Jan Krönke, Andreas Mackensen, and Heiko Bruns.
    Cancer Immunol Res. 2021 Mar;9(3):265-278

Kontakt

heiko.bruns(at)uk-erlangen.de

Weiterführende Links

https://www.medizin5.uk-erlangen.de/forschung/ag-bruns/

 

Stand: 04/2026

Leitung

PD Dr. Simon Völkl, MHBA

Mitglieder

Dr. Julia Hitschfel, Dr. Nina Eisenhauer, Nora Rebecca Schwingen, Lena Tarantik, Nicole Bialas, Lina Meretuk, Dorothea Gebhart, Florentine Schonath, Alena Hammerschmitt

Überblick Forschungsinhalte

Die adoptive Immuntherapie mit Chimären Antigenrezeptor (CAR-) T Zellen hat zu beachtlichen Behandlungserfolgen bei Patienten mit B-Zell-Neoplasien geführt und entwickelt sich immer mehr zu einem neuen Standard-Therapieverfahren für Patienten mit rezidivierten oder refraktären Erkrankungen. Trotz dieses Fortschrittes kommt es bei einem signifikanten Teil der Patienten jedoch zu einem Rückfall oder Progress des Tumors. Unser Ziel ist es, die Mechanismen zu verstehen, welche die Funktionalität und Persistenz von CAR-T Zellen steuern, und so Strategien zur Überwindung des Behandlungsversagens zu finden. Durch die Kombination von innovativen molekularen und funktionellen Techniken untersuchen wir die Eigenschaften und Dynamik von sowohl schnell-expandierenden Effektor CAR-T Zellen als auch von Langzeit-persistierenden CAR-T Zellen.

Darüber hinaus beschäftigt sich unsere Arbeitsgruppe mit der Bedeutung und Funktion von humanen T-Zellen bei auto- und alloreaktiven Immunreaktionen. Die Regulation von T-Zellen durch molekulare und zelluläre Mechanismen ist von zentraler Bedeutung bei der Steuerung von Immunantworten. Hierbei untersuchen wir die Interaktion von u.a. regulatorischen und Effektor T-Zellen, die zugrundeliegenden Schlüsselmoleküle und Signalwege und mögliche Fehlsteuerungen und Immundefekte.

Laufende Forschungsprojekte

  • Immunphänotyp und Expansion von CAR T-Zellen
  • Kontrollmechanismen der CAR T-Zell Funktionalität und Persistenz
  • Vergleich der CAR T-Zelltherapie im onkologischen vs. autimmun Kontext
  • Beeinflussung von auto-/alloreaktiven T-Lymphozyten
  • Autoimmun-Lymphoproliferatives Syndrom (ALPS)

Methoden

  • Analyse von Immunzellen mittels hoch-dimensionaler Durchflusszytometrie
  • Zytotoxizitäts- und Signaling Assays
  • scRNA/TCR sequencing

Kooperationspartner

  • Prof. Dr. Fabian Müller, Medizinische Klinik 5
  • PD Dr. Michael Aigner, Medizinische Klinik 5
  • Prof. Dr. Markus Metzler, Kinderklinik
  • Prof. Dr. Peter Fasching, Frauenklinik
  • Prof. Dr. Marion Suklewe, LMU Universitätsklinikum, München
  • PD Dr. Anne Rensing-Ehl, CCI Freiburg
  • Prof. Dr. Maurizio Miano, Gaslini Children's Hospital, Genua

Publikationen

Kontakt

09131 85-43168

simon.voelkl(at)uk-erlangen.de

Weiterführende Links

https://www.medizin5.uk-erlangen.de/forschung/ag-voelkl-regulation-der-t-zell-immunitaet/

https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/?term=v%C3%B6lkl%2C+simon%5BAuthor%5D+OR+voelkl%2C+simon%5BAuthor%5D+OR+volkl%2C+simon%5BAuthor%5D&sort=date&size=50

 

Stand: 04/2026

Leitung

Dr. Michael Aigner

Überblick Forschungsinhalte

  • GMP Konforme Herstellung von zellulären Arzneimittel
  • CAR T-Zellen
  • TRUCKs

Laufende Forschungsprojekte

  • Klinische Prüfungen mit CAR T Zellen
  • Etablierung der Herstellung von TRUCKs und Adapter CARs
  • Virusspezifische T Zellen gegen SARS-CoV 2

Methoden

  • GMP konforme Herstellung und Qualitätskontrolle zellulärer, gentechnisch veränderter Arzneimittel (ATMP)

Kooperationspartner

  • UK Münster
  • UK Regensburg
  • Miltenyi Biotec
  • Miltenyi Biomedicine

Publikationen

 

Kontakt

Michael Aigner
UK Erlangen
Medizinische Klinik 5

 

Stand: 04/2026

Leitung

Dr. rer. nat. Gloria Lutzny-Geier

Überblick Forschungsinhalte

Die Kommunikation mit dem Mikromilieu ist für Tumorzellen überlebensnotwendig. Das Ziel ist zu verstehen, wie verschiedene Signalwege durch intrinsische Signale der Tumorzelle selbst und extrinsische Signale des Mikromilieus aktiviert werden. Wir untersuchen die Regulationsmechanismen im Tumormikromilieu in einer 3-dimensionalen Umgebung, um CAR T-Zelltherapien zu verbessern und neue therapeutische Ansätze zu entwickeln.

Das Prinzip der 3D Zellkultur verwenden wir auch bei soliden Tumoren, wie dem Mammakarzinom. Die Generierung von primären Organoiden gibt uns die Möglichkeit die Kommunikation und Migration von Immunzellen sowie das Metastasierungspotential des Tumors zu charakterisieren.

Laufende Forschungsprojekte

  1. Kommunikation von malignen B-Zellen mit T-Zellen und mesenchymalen Stromazellen der Knochenmarknische:
    • 3-dimensionale in vitro Modelle
    • CAR-T-Zell-Funktionalität
    • Metabolismus des Mikromillieus
  2. Mammakarzinom-Organoide: Metastasierung und T-Zell-Funktionalität
  3. Präklinische Forschung: CAR T-Zelltherapie bei Autoimmun-Patienten (zusammen mit Med 3)

Methoden

  • Durchflusszytometrie
  • ELISA
  • Quantitative RT-PCR
  • Westernblot
  • 3D-konfokale Mikroskopie
  • IHC-IF, H&E Färbungen
  • 3D-Zellkulturen, Organoide
  • CAR T-Zell Herstellung
  • Live Cell Imaging
  • Cells under flow

Kooperationspartner

Intern:

  • AG Aigner (Med 5)
  • AG Völkl (Med 5)
  • AG Kremer/Reimann (Med 5)
  • Prof. Dr. Metzler (Kinderklinik)
  • Prof. Dr. Fasching (Frauenklinik)
  • Dr. Tripal (OICE)
  • Prof. Dr. Schett (Med 3)

Extern:

  • Prof. Dr. Oostendorp, Klinikum rechts der Isar, TU München
  • Prof. Dr. Egle, Cancer Research Institute Salzburg, Österreich
  • Dr. Bosch, Leiden, Niederlande
  • Prof. Anita Kremer, Zürich
  • Kyverna, Kalifornien, USA

Publikationen

Kontakt

Gloria.lutzny-geier(at)uk-erlangen.de

Weiterführende Links

https://www.medizin5.uk-erlangen.de/forschung/ag-lutzny-geier

 

Stand: 04/2026

Leitung

Dr. Hannah Reimann

Mitglieder

  • Dr. Hannah Reimann, Arbeitsgruppenleiterin
  • Katharina Korn, PhD Studentin
  • Vanessa Lang, MTA
  • Katharina Götz, MTA
  • Tabea Koch, MD Studentin

Überblick Forschungsinhalte

Unsere Arbeitsgruppe beschäftigt sich vor allem mit der T-Zell basierten Immuntherapie maligner Tumore. In diesem Zusammenhang analysieren wir die intrazelluläre Prozessierung von MHC Klasse II restringierten Antigenen, erforschen mögliche Regulationsmechanismen der indirekten Antigenpräsentation und den Effekt Zell-spezifischer Prozessierung von MHC Klasse II Antigenen in Bezug auf die allogene Stammzelltransplantation. Eine unterschiedliche Prozessierung dieser Antigene verstärkt möglicherweise den Graft-versus-Leukämie Effekt ohne eine einhergehende Verstärkung der Graft-versus-Host Erkrankung. Zusätzlich analysieren wir den Effekt der Antigenprozessierung nicht nur im Kontext der allo-Reaktivität, sondern auch bei Autoimmunerkrankungen. Ein weiterer Forschungsschwerpunkt stellt die Interaktion zwischen T-Zellen und Tumorzellen im 3D-Brustkrebsorganoid dar.

Laufende Forschungsprojekte

  • Entschlüsselung der Rolle DM-sensitiver und DM-resistenter Antigene in der Immunantwort nach allogener Stammzelltransplantation (ASZT) - DFG A01 SFB TRR 221
  • Charakterisierung Neoantigen-gerichteter T-Zell Rezeptor-basierter Zelltherapien in einem 3D-Brustkrebsmodell - ELAN  P157

Methoden

  • Durchflusszytometrie
  • ELISA
  • quantitative RT-PCR
  • Klonierungen
  • Virale Transduktionen
  • Western Blot
  • 3D-Zellkulturen
  • Organoide
  • TCR-Sequenzierung
  • Zellkultur

Kooperationspartner

  • Dr. Michael Aigner, Medizinische Klinik 5, Erlangen
  • Prof. Dr. Maike Büttner-Herold, Nephropathologie, Erlangen
  • Prof. Dr. Peter Fasching, Frauenklinik, Erlangen
  • Prof. Dr. Kai Hildner, Medizinische Klinik 1, Erlangen
  • Dr. Gloria Lutzny-Geier, Medizinische Klinik 5, Erlangen
  • PD Dr. Kilian Schober, Mikrobiologisches Institut, Erlangen
  • Prof. Dr. Thomas Winkler, Genetik, Erlangen
  • PD Dr. Simon Völkl, Medizinische Klinik 5, Erlangen
  • Dr. Marieke Griffioen, LUMC, Leiden, Niederlande
  • Prof. Dr. Simone Thomas, Innere Medizin 3, Regensburg

Publikationen

  • Zeun, J., Bernhardt, A. L., Neubeck, S., Lang, V., Korn, K., Nagel, L., Kunert, T., Brey, S., Atreya, I., Denzin, L., Bäuerle, T., Hildner, K., Büttner-Herold, M., Winkler, T., Mackensen, A., Reimann, H., Kremer, A. N. Selective H2-O Tissue Expression Reduces Risk for Graft-versus-Host Disease in an In Vivo Transplantation Model. Transpl. Cell. Ther. 31(2025)584.e1-584.e12. doi.org/10.1016/j.jtct.2025.04.022
  • Reimann, H., C. Moosmann, K. Schober, V. Lang, J. Verhagen, J. Zeun, A. Mackensen, A. N. Kremer, S. Voelkl, and M. Aigner. “Identification and Characterization of T-cell receptors with therapeutic specificity against all SARS-CoV 2 strains.” Immunobiology, (Aug 2023). https://doi.org/10.1016/j.imbio.2023.152720.
  • Bergmann, C., F. Muller, J. H. W. Distler, A. H. Gyorfi, S. Volkl, M. Aigner, S. Kretschmann, H. Reimann, T. Harrer, N. Bayerl, S. Boeltz, A. Wirsching, J. Taubmann, W. Rosler, B. Spriewald, J. Wacker, A. Atzinger, M. Uder, T. Kuwert, A. Mackensen, and G. Schett. "Treatment of a Patient with Severe Systemic Sclerosis (Ssc) Using Cd19-Targeted Car T Cells." Ann Rheum Dis 82, no. 8 (Aug 2023): 1117-20. https://dx.doi.org/10.1136/ard-2023-223952
  • Muller, F., S. Boeltz, J. Knitza, M. Aigner, S. Volkl, S. Kharboutli, H. Reimann, J. Taubmann, S. Kretschmann, W. Rosler, B. Manger, J. Wacker, D. Mougiakakos, S. Jabari, R. Schroder, M. Uder, F. Roemer, G. Kronke, A. Mackensen, and G. Schett. „CD19-targeted CAR T cells in refractory antisynthetase syndrome.” The Lancet (Feb 2023). doi: 10.1016/ S0140-6736(23)00023-5
  • Kretschmann, S., S. Volkl, H. Reimann, G. Kronke, G. Schett, S. Achenbach, G. Lutzny-Geier, F. Muller, D. Mougiakakos, J. Dingfelder, C. Flamann, L. Hanssens, R. Gary, A. Mackensen, and M. Aigner. "Successful Generation of Cd19 Chimeric Antigen Receptor (Car) T Cells from Patients with Advanced Systemic Lupus Erythematosus (Sle)." Transplant Cell Ther  (Oct 11 2022). https://dx.doi.org/10.1016/j.jtct.2022.10.004.
  • Mackensen, A., F. Muller, D. Mougiakakos, S. Boltz, A. Wilhelm, M. Aigner, S. Volkl, D. Simon, A. Kleyer, L. Munoz, S. Kretschmann, S. Kharboutli, R. Gary, H. Reimann, W. Rosler, S. Uderhardt, H. Bang, M. Herrmann, A. B. Ekici, C. Buettner, K. M. Habenicht, T. H. Winkler, G. Kronke, and G. Schett. "Anti-Cd19 Car T Cell Therapy for Refractory Systemic Lupus Erythematosus." Nat Med 28, no. 10 (Oct 2022): 2124-32. https://dx.doi.org/10.1038/s41591-022-02017-5.
  • Reimann, H., A. N. Kremer, V. Blumenberg, K. G. Schmidt, M. Aigner, B. Jacobs, N. Eisenhauer, A. Kampf, W. Roesler, S. Kharboutli, D. Mougiakakos, V. Lang, C. Lischer, P. Irrgang, M. Leppkes, J. V. Gonzalez, G. Kronke, A. E. Kremer, M. Tenbusch, H. Bruns, T. Harrer, F. Muller, G. Schett, A. Mackensen, M. Subklewe, and S. Volkl. "Cellular and Humoral Immune Responses to Sars-Cov-2 Vaccination in Patients after Cd19.Car-T Cell Therapy." Blood Adv  (Oct 7 2022). https://dx.doi.org/10.1182/bloodadvances.2022007806.
  • Bernhardt, A. L., J. Zeun, M. Marecek, H. Reimann, S. Kretschmann, J. Bausenwein, E. D. van der Meijden, M. M. Karg, T. Haug, L. Meintker, G. Lutzny-Geier, A. Mackensen, and A. N. Kremer. "Influence of Dm-Sensitivity on Immunogenicity of Mhc Class Ii Restricted Antigens." J Immunother Cancer 9, no. 7 (Jul 2021). https://dx.doi.org/10.1136/jitc-2021-002401.
  • Reimann, H., A. Nguyen, J. Z. Sanborn, C. J. Vaske, S. C. Benz, K. Niazi, S. Rabizadeh, P. Spilman, A. Mackensen, M. Ruebner, A. Hein, M. W. Beckmann, E. D. van der Meijden, J. Bausenwein, S. Kretschmann, M. Griffioen, J. Schlom, J. L. Gulley, K. L. Lee, D. H. Hamilton, P. Soon-Shiong, P. A. Fasching, and A. N. Kremer. "Identification and Validation of Expressed Hla-Binding Breast Cancer Neoepitopes for Potential Use in Individualized Cancer Therapy." J Immunother Cancer 9, no. 6 (Jun 2021). https://dx.doi.org/10.1136/jitc-2021-002605.

Kontakt

Dr. Hannah Reimann
09131 85-43187
hannah.reimann(at)uk-erlangen.de

Weiterführende Links

https://www.medizin5.uk-erlangen.de/forschung/ag-kremer/

 

Stand: 04/2026

Leitung

PD Dr. med. Silvia Spörl

Überblick Forschungsinhalte

Spender T-Zellen sind die wesentlichen Effektorzellen für die erwünschte Graft-versus-Leukämie-Reaktion, aber auch für die unerwünschte Graft-versus-Host-Reaktion nach allogener Stammzelltransplantation (allo SCT).

Unsere Arbeitsgruppe beschäftigt sich einerseits mit der NF-kB Regulation in allogenen T-Zellantworten, besonders im Hinblick auf neue Therapieoptionen bei der Graft-versus host disease (GvHD) oder im Rezidiv nach allogener Transplantation. In diesem Kontext untersuchen wir den Einfluss kostimulatorischer Moleküle (wie etwa OX40) auf allogene T-Zellantworten, insbesondere im Hinblick auf die NF-kB Induktion und Regulation.

Zusätzlich interessieren uns spezielle T-Zell-Subtypen, wie etwa die follikulären T-Helferzellantworten im Krankheitsbild der akuten und chronischen GvHD. Die CD4+ CXCR5+ follikulären T-Helferzellen vermitteln B-Zellantworten und spielen bei Autoimmunkrankheiten, Lymphomen aber auch bei der GvHD eine zentrale Rolle. Wir arbeiten an einer näheren Charakterisierung der T follikulären Helferzellen im Kontext der allogenen Transplantation, insbesondere im Hinblick auf deren regulatorische Eigenschaften.

Laufende Forschungsprojekte

Charakterisierung T follikulärer Helferzellen nach allogener Transplantation

Projekt B01, SFB TRR221

NF-kB Regulation bei allogenen T-Zell Antworten

Biomarker bei oralen Plattenepithelkarzinom (gemeinsam mit MKG UK Regensburg)

Förderung

  • DFG
  • Forschungsstiftung Medizin
  • Manfred-Roth Stiftung

Methoden

Single cell RNA sequencing, FACS, Zellkultur, PCR etc.

Kooperationspartner

  • PD Dr Friederike Berberich-Siebelt, UK Würzburg
  • Prof. Dr Thomas Winkler, Universität Erlangen, Fiebinger Zentrum
  • PD Dr. Petra Hofmann, UK Regensburg
  • Prof. Dr. Daniel Wolff, UK Regensburg

Kontakt

PD Dr. Silvia Spörl

Tel: 09131 85-45021

Silvia.spoerl@uk-erlangen.de 

Weiterführende Links

AG Charakterisierung neuer Regulatoren bei allogenen T-Zellantworten (Spörl) - Medizin 5 | Uniklinikum Erlangen (uk-erlangen.de)

 

Stand: 04/2026

Leitung

Prof. Dr. Frederik Graw

 

Überblick Forschungsinhalte

Unsere Forschung beschäftigt sich mit der Analyse des Immunsystems und dessen komplexen Dynamiken im Rahmen von Infektionen, Entzündungen und malignen Erkrankungen. Durch die Kombination von experimentellen und klinischen Daten mit Methoden aus den Bereichen der mathematischen Modellierung, Systembiologie und Datenanalyse versuchen wir besser zu verstehen, wie sich Immunantworten bilden, wie Immunzellen miteinander interagieren und ihre Wirkung entfalten, und welche Prozesse und Faktoren diese komplexen Dynamiken, und damit auch Krankheitsverläufe, steuern und beeinflussen. Dabei geht es uns insbesondere um die Entwicklung von Methoden zur Integration unterschiedlicher biomedizinischer Daten (z.B. Einzelzellmessungen, bildgebende Verfahren, Serologie), um ein möglichst umfassendes Bild der Prozesse während einer Immunreaktion zu bekommen. Das Methodenspektrum reicht dabei von zellbasierten Modellen und agentenbasierten Simulationen einzelner Gewebestrukturen, bis hin zu Methoden des maschinellen Lernens zur Analyse hochkomplexer Datensätze und Modellsysteme. Ziel unserer Forschungen ist die Untersuchung grundlegender Prozesse der Aktivierung, Differenzierung, Migration, Effektivität und Regulierung von zellulären Immunantworten (B-Zellen, T-Zellen), insbesondere im Bereich der allogenen Stammzelltransplantation bei Patienten mit hämatologischen Neoplasien und der Tumorimmunologie, aber auch zur Entwicklung optimaler Vakzinierungsstrategien gegen pathogene Erreger. Hierzu zählen Fragen zur Wechselwirkung immunaktivierender und -regulierender Faktoren, die Entwicklung gewebe- und tumorspezifischer Immunantworten, sowie die Identifikation von Biomarkern zur Vorhersage des Therapieerfolgs von CAR-T-Zelltherapien und der Ausbildung von Graft-versus-Host-Disease (GvHD) nach allogener Stammzelltransplantation. Ein zweiter Schwerpunkt wird sich mit den komplexen Dynamiken von Entzündungs- und Immunprozessen innerhalb von Gewebestrukturen, wie z.B. im Rahmen von Tumorerkrankungen oder Infektionen beschäftigen. Hier geht es darum zu ergründen, wie sich lokale Immunantworten ausbilden, wie lokale Entzündungsreaktionen zu pathologischen Veränderungen führen, und wie Gewebestrukturen die Effektivität von Immunantworten beeinflussen. Unsere Ansätze sollen dabei helfen, den Einfluss von bestimmten Zelleigenschaften, Molekülkonzentrationen und pathologischen Gewebeveränderungen auf den Krankheitsverlauf zu untersuchen und mögliche therapeutischen Ansatzpunkte zu identifizieren.

 

Team

  • Julia Hafenbrak (PhD Studentin)
  • Pascal Lukas (PhD Student)
  • Anna-Lena Rösch (PhD Studentin)
  • Szilard Varga (PhD Student)
  • Lennart Wicker (PhD Student)

 

Laufende Forschungsprojekte

  • MORIARTY - Modellierung der Co- Infektionsdynamik respiratorischer Viren in humanem Epithelgewebe (DFG/ANR)
  • Nutzung von Gewebehomöostase-fördernder Funktionen spezialisierter regulatorischer T-Zellen in Graft-versus-Host-Disease (DFG TRR221, Projekt B08)
  • BAVARIA-3D – Validierung des Ansprechens auf Immuntherapie-Anwendungen in 3D-Modellen für multiples Myelom (BZKF)
  • CAR T Control - Verständnis und Adressierung von Toxizitäten bei CAR T-Zelltherapien (BZKF)
  • RETENTION - Verständnis von T-Zellturnover und Migrationsdynamik durch Einzelzell-basierte mathematische Modellierung (Boehringer Ingelheim Stiftung)
  • Entschlüsselung der T-Zellmigrationskinetik bei chronischer intestinaler Entzündung (IZKF Erlangen)

     

Methoden

  • Mathematische Modellierung
  • Multiskalen Modelle
  • Multimodale Datenintegration
  • Räumlich-zeitliche Dynamik in komplexen Systemen

     

Kooperationspartner

  • Prof. Dr. Fabian Müller
  • PD Dr. Simon Völkl
  • Prof. Dr. Kilian Schober
  • Prof. Dr. Krystelle Nganou Makamdop
  • Prof. Dr. Sebastian Zundler (UK Erlangen)
  • Prof. Dr. Oliver Fackler (Univ. Heidelberg)
  • Prof Dr. Markus Feuerer (LIT, Regensburg)
  • Prof. Dr. Annette Oxenius (ETH Zürich)
  • Prof. Dr. Wolfgang Kastenmüller (Univ. Würzburg)
  • Prof. Dr. Andreas Beilhack (Univ. Würzburg)
  • Dr. Jeremie Guedj (Inserm, Paris)

 

Publikationen

https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/?term=Graw+F&sort=date

 

Kontakt

Prof. Dr. Frederik Graw

09131 85 47601

frederik.graw(at)uk-erlangen.de

 

Weiterführende Links

https://www.medizin5.uk-erlangen.de/forschung/ag-modellierung-von-immunprozessen-graw/

 

Stand: 04/2026